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分子生物學實驗方法

閱讀次數:1369   發布時間:2012/9/18 8:43:50

章 基因克隆
1. 操作流程
收集基因信息——>設計引物——>PCR ——>回收目的片段——>與載體
連接,取得連接產物 ——> 用感受態細胞做轉化 ——>接菌——>陽性克隆鑒
定(酶切法或PCR)——>質粒抽提——>質粒測序——>測序結果分析——>克隆
信息輸入數據庫——>質粒實物保存
2. 方法
2.1 設計引物
引物設計要求:引物長度為25bp-35bp.forward primer 和reverse primer 的Tm
為70℃(±4℃),且兩條引物的Tm 相差不超過4℃。引物之間及引物本身避免形
成穩定的二聚體或發夾結構,引物與模板不能有任何錯配。
forward primer 5’加:GGCCAATCCGGCC
reverse primer 5’加:GGCCTCTAAGGCC
2.2 PCR
2.2.1 PCR 反應體系
模扳(100ng/ul 質粒) 2.00μl
4dNTP(10mM) 1.00μl
10×PCR Buffer 5.00μl
MgCl2(25mM) 5.00μl
5’Primer (10-12uM) 4.00μl
3’Primer (10-12uM) 4.00μl
5M 甜菜堿 10.00μl
Pfu (5U/ul) 0.50μl
ddH20 18.50μl
章 基因克隆
總計 50.00μl
2.2.2 PCR 反應程序
1)從cDNA 文庫克隆基因
Stage1 Stage2 Stage3
1 Cycle 30Cycle 1 Cycle
95℃ 94℃ 60℃ 68℃ 68℃ 4℃
2min 30sec 30 sec
Xmin(2
min/Kb)
10min 1min
注:Pfu 酶*適延伸溫度為68℃。
2)從含目的基因質粒中克隆
Stage1 Stage2 Stage3
1 Cycle 22Cycle 1 Cycle
95℃ 94℃ 60℃ 68℃ 68℃ 4℃
2min 30sec 30 sec
Xmin(2
min/Kb)
10min 1min
2.3 割膠回收目的片段
(QIAGEN QIAquickGel Extraction Kit)
1) 1%Agarose 膠電泳將目的DNA 片段用干凈的手術刀割下,放入1.5ml 離心管
2) 稱重后,在1.5ml 離心管中加入3 倍膠體積的buffer QG(100mg 加300ul)
3) 50℃水浴中放置10min(至膠完全溶解),每2-3 分鐘混勻一次(溶膠液應于
buffer QG 顏色相同)
4) 加入1 倍膠體積的異丙醇然后充分混勻,靜置片刻。
5) 將樣品轉移入柱子中(柱子的容量為800uL),然后13000rpm*1min 離心
6) 取下柱子,棄流出液,將柱子放回到剛才那個收集管中
章 基因克隆
7) 加入0.75mL buffer PE 至柱子,室溫放置2-5min,然后13000rpm*1min 離心
8) 取下柱子,棄流出液,再次13000rpm*1min 離心
9) 將柱子放置在一支新的1.5mL 離心管中,加入50uL EB buffer (或無菌H2O)
至膜中央,靜置片刻,然后13000rpm*1min 離心,然后測定濃度
2.4 連 接
在連接反應中通常要求: (目的基因分子數:載體分子數=3:1)
連接反應體系
sample + -
10*T4 buffer 1.00μl 1.00μl 1.00μl
PGEM-T (50ng/ul) 1.00μl 1.00μl 1.00μl
目的基因(150ng/ul) 1.00μl 1.00μl /
T4 連接酶 0.50μl 0.50μl 0.50μl
補水 6.50μl 6.50μl 7.50μl
于16℃連接過夜。或室溫(25℃)1 小時以上。
2.5 感受態細胞制備及轉化
2.5.1 CaCl2 制備感受態細胞(DH5α 、DH10B、0 )
1) 接過夜菌 在15ml 試管中加入3ml LB 培養基,從平板上挑取一單克隆接
種,37℃,260rpm,培養過夜,約16 小時。
2) 接菌 取2ml 過夜菌接入200ml 新鮮的LB 培養基, 37℃,260rpm,培
養,直至OD600=0.4-0.5(一般約2 小時),然后將菌液冰浴30-60 分鐘。
3) 收菌 4℃,5000rpm×5min,棄上清。
4) CaCl2 懸浮 若50ml 菌液收菌,用10ml 0.1M 的CaCl2 輕輕吹打,充分懸
浮,冰浴10min。
5)離心 4℃,5000rpm×5min,棄上清。
章 基因克隆
6)CaCl2 懸浮 以2ml 0.1M 的CaCl2 輕輕吹打,充分懸浮,冰浴30min 即感
受態制備完成。
此時感受態可直接使用或冰浴過夜第二天使用或加入10%的滅菌甘油,混勻后
-80℃凍存,以后使用(一般可存1 個月)。
注: 制備感受態細胞要求嚴格控制溫度,制備過程在冰上操作。
2.5.2 轉化(PGEM-T vector)
1) 準備1.5ml 的離心管,冰浴預冷。
2) 取100ul 感受態細胞,加入5ul 連接液,冰浴45-60min。
3) 42℃熱刺激90sec。(此關鍵步驟,一定注意溫度及時間)
4) 冰浴2min。
5) 加LB 培養基900ul,37℃,150rpm 培養45-60min。
6) 4000rpm×3min 離心。
7) 留100ul 上清,棄多余部分,混勻,涂布到含氨芐青霉素的LB 板(預先涂
布X-gal 和IPTG)。
8) 37℃ 培養箱倒置培養過夜,約16 小時。
2.6 接菌
1) 轉化得到藍白菌落篩選板 (因為我們一般用的是PGEM-T 做連接,經X-gal
處理后,有插入片段的顯白色;載體自連的顯藍色,因此得到篩選。)
2) 挑取白色的菌落接到含氨芐青霉素的LB 培養基。
3) 37℃,260rpm 培養。
4) 培養5-6 小時后挑取2ul 菌液為模板做PCR 鑒定。
5) 以PCR 結果,將有目的片段插入的樣品以5ml LB 培養基再次接菌,37℃,
260rpm 培養過夜,約16 小時。
2.7 陽性克隆鑒定 (PCR 鑒定)
2.7.1PCR 鑒定體系
章 基因克隆
10X Taq buffer 3 ul
4X dNTP (10mM) 0.5 ul
Taq DNA polymerase(5U/ul) 0.2ul(1U)
10uM引物 (雙向) 各1ul
50%DMSO(which is optional) 1ul
模板:過夜菌液 / 挑單克隆 2ul
加滅菌水至 30ul
2.7.2 PCR 鑒定程序:
94℃ 5min
94℃ 30s
30cycle 55℃ 30s
72℃ 3min
72℃ 10min
4℃ +∞
30ul 上樣,走電泳(以100bp plus marker 為對照)→核對片斷大小
2.8 質粒抽提 (質粒小量抽提試劑盒)
1) 收菌 以10000 rpm ×1 min 離心收菌。(一般抽提一份用3-4ml 菌液)
2) 棄上清。
3) 加100ul 冰浴Solution I(含Rnase A),渦旋振蕩,使菌體充分懸浮。
4) 加200ul Solution II,溫和混勻6 次。(此過程不超過5min)
5) 加280ul Solution III,溫和混勻6 次。
6) 以14000 rpm×10 min 離心。
7) 取上清,過吸附柱,以10000 rpm×1 min,棄濾液。
8) 吸附柱內加450ul Buffer2,10000 rpm×1 min,棄濾液。
9) 反復步驟8)一次。
章 基因克隆
10) 14000 rpm×1 min 離心。
11) 將吸附柱旋轉180 度后再14000 rpm×1 min 離心。
12) 加40ul 50℃預熱的ddH2O(或EB buffer)于吸附柱的膜中央,室溫靜置
2min。
13) 14000 rpm×1 min 離心并收集洗脫液,即質粒DNA。
2.9 測 序
1) ABI377 測序儀測序。
2) 測序結果分析:用軟件Vector NTI Suite 6 分析測序結果。每個克隆相應的測
序結果,分析結果,存儲信息分類輸入數據庫http://192.168.0.2/index.htm。
克隆信息管理系統。將測序完成的克隆編號入庫。
3. 基因克隆的編碼
根據實驗基因引物的號碼相對應編制。
如:基因引物編號: 1000_f 1000_r
克隆編號: 1000A1 or 100092
(注:號碼倒數第二位為日期編號: 1—9 為阿拉伯數字 10=A,11=B,12=C…
*后一位為克隆數編號,一般為1—3)

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